정맥 천자

Venipuncture
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정맥 천자
정맥시술 영상

의학에서 정맥시술 또는 정맥시술은 정맥혈채취(정맥절제술이라고도 함) 또는 정맥치료를 목적으로 정맥내 접근을 얻는 과정이다.의료 분야에서 이 절차는 의료 실험실 과학자, 의료 종사자, 일부 EMT, 구급대원, 정맥절제술사, 투석 기술자 및 기타 간호 [1]스태프에 의해 수행됩니다.수의학에서는 수의사와 수의사가 시술한다.

정확한 검사 결과를 얻으려면 혈액 검체 채취를 위한 표준 절차를 따르는 것이 필수적이다.혈액을 채취하거나 시험관을 채우는 과정에서 오류가 발생하면 검사 결과가 [2]잘못될 수 있습니다.

정맥시술은 가장 일상적으로 수행되는 침습적 시술 중 하나이며 다음 다섯 가지 이유 중 하나로 수행됩니다.

  1. 진단 목적으로 혈액을 채취한다.
  2. 혈액 [3]성분 수준을 모니터링한다.
  3. 의약품, 영양 또는 화학요법을 포함한 치료적 치료를 시행한다.
  4. 철분 또는 적혈구(적혈구)의 과잉으로 인한 혈액 제거
  5. 주로 기증자나 다른 사람에게 수혈하기 위해 나중에 사용하기 위해 혈액을 채취합니다.

혈액 분석은 의료 분야에서 임상의가 사용할 수 있는 중요한 진단 도구입니다.

혈액은 상지의 [1]표피 정맥에서 가장 흔하게 채취된다.팔꿈치 앞쪽 입방정맥 안에 있는 중앙 입방정맥은 많은 큰 신경들이 근처에 위치하지 않고 피부 표면에 가까이 있습니다.정맥 천공을 위해 입방정맥에서 사용될 수 있는 다른 정맥으로는 두정맥,[4] 바질정맥, 그리고 정중전완정맥이 있다.

미량의 혈액은 핑거스틱 샘플링을 통해 채취할 수 있으며 힐프릭을 통해 유아 또는 날개 달린 주입 바늘을 사용하여 두피 정맥에서 채취할 수 있다.

정맥절개술은 또한 혈색소증, 1차 및 2차 다세포증과 같은 특정 질병의 치료법이다.

합병증

1996년 헌혈자에 대한 연구는 6,300명 중 1명이 신경 [5]손상을 입었다는 것을 발견했다.

장비.

정맥에서 피를 뽑을 수 있는 방법은 여러 가지가 있으며, 사용되는 방법은 사람의 나이, 사용 가능한 장비, 필요한 검사 유형에 따라 달라집니다.

미국, 영국, 캐나다, 홍콩의 채혈은 대부분 진공관 시스템으로 이루어진다.Vacutainer(Becton, Dickinson and company)와 Vacuette(Greiner Bio-One)의 두 가지 일반적인 시스템이 있습니다.장비는 튜브 또는 니들 홀더/허브라고도 하는 플라스틱 어댑터, 피하 바늘 및 진공 튜브로 구성됩니다.특정 상황에서는 주사기가 사용될 수 있으며, 종종 짧은 바늘에 부착된 플라스틱 카테터인 나비 바늘과 함께 사용될 수 있습니다.개발도상국에서는 진공관 시스템이 혈액 [citation needed]채취에 선호되는 방법입니다.

진공관 또는 진공관 포함

Vacutainer 혈액병

Greiner Bio-One은 1985년 VACUETTE라는 브랜드로 사상 최초의 플라스틱 배출 채혈관을 제조했습니다.현재 이 장치에 대한 특허가 일반에 공개되었기 때문에 많은 회사들이 진공관을 판매하고 있습니다.이러한 튜브는 밀폐된 튜브에서 특정 부피의 가스를 제거한 상태로 제조됩니다.허브나 이송 장치의 바늘을 스토퍼에 삽입하면 튜브의 진공이 필요한 양의 [citation needed]혈액을 자동으로 흡입합니다.

기본 ETS(Effired Tube System)는 니들, 튜브 홀더 및 진공 튜브로 구성됩니다.니들은 채취하기 전에 정맥절제술사가 튜브 홀더에 부착하거나 제조업체에서 한 단위로 제공할 수 있습니다.바늘은 튜브 홀더의 끝을 통해 돌출되며 양 끝에 바늘이 있습니다.정맥 천공 부위를 먼저 청소하고 지혈대를 적용한 후 정맥내 삽입술사는 튜브 홀더에 부착된 바늘을 제거하고 정맥에 바늘을 삽입한 후 튜브 홀더에 대피관을 밀어 넣으며 튜브의 스토퍼가 바늘의 후단에 의해 관통된다.그러면 튜브의 진공이 필요한 혈액을 정맥에서 직접 뽑아냅니다.한 바늘에 여러 개의 진공 튜브를 차례로 부착 및 분리할 수 있으므로 한 번의 시술로 여러 개의 샘플을 얻을 수 있습니다.이는 니들이 밖으로 밀릴 때까지 니들을 씰링하는 니들 캐뉼라 후단의 유연한 고무 피팅인 다중 샘플 슬리브 때문에 가능합니다.이렇게 하면 각 시험관이 제거되고 다음 시험관이 뚫릴 때 정맥에 삽입된 바늘의 뒤쪽에서 피가 자유롭게 빠져나가는 것을 막을 수 있습니다.OSHA 안전 규정에서는 바늘 또는 튜브 홀더에 우발적인 바늘 스틱 [6]부상을 방지하기 위해 시술 후 바늘을 덮을 수 있는 안전 장치가 장착되어 있어야 합니다.

나비 바늘 키트 및 주사기에서 진공관을 채우는 데 사용되는 피팅 및 어댑터도 사용할 [citation needed]수 있습니다.

정맥절제술사가 선택할 수 있는 몇 가지 바늘 게이지가 있습니다.가장 일반적으로 사용되는 것은 21g(녹색 상단) 바늘, 22g(검은 상단) 바늘, 21g(녹색 레이블) 나비 바늘, 23g(연청색 레이블) 나비 바늘 및 25g(주황색 또는 짙은 파란색 레이블) 나비 바늘입니다(그러나 이 바늘은 너무 작아서 종종 용혈이 발생할 수 있음).혈액 샘플).또한 다양한 테스트 [7]요구 사항에 맞게 튜브 및 병 크기와 부피가 있습니다.

첨가물 및 추첨 순서

채혈되는 시험관에는 여러 가지 첨가물이 하나 이상 포함되어 있을 수 있습니다.일반적으로 전혈이 필요한 검사는 항응고제 EDTA가 포함된 시험관에서 채취한 혈액 샘플을 필요로 합니다.EDTA는 응고를 방지하기 위해 칼슘 킬레이트 처리를 합니다.EDTA는 세포 형태학에 최소한의 손상을 주기 때문에 혈액학 테스트에 선호된다.구연산나트륨은 응고 테스트를 위해 채취한 시료에 사용되는 항응고제이다.대부분의 화학 및 면역 테스트는 혈청에 대해 수행되며 혈청은 원심분리기를 통해 혈액 검체를 응고시킨 다음 분리하여 생성됩니다.이러한 검체는 비첨가성 튜브 또는 응고 활성제가 포함된 튜브에서 수집됩니다.이 응고 활성제는 일부 검사를 방해할 수 있으므로 이러한 경우에는 일반 튜브가 권장되지만 검사가 지연됩니다.리튬 헤파린 또는 헤파린 나트륨이 함유된 튜브는 응고가 필요하지 않고 채취 후 즉시 원심분리될 수 있기 때문에 다양한 화학 테스트에 일반적으로 사용됩니다.포도당 시험에는 플루오르화나트륨과 옥살산칼륨의 조합이 사용되며, 이러한 첨가제는 응고를 방지하고 당화증을 멈추기 때문에 [8]채집 후 혈당치가 유지된다.또 다른 특수 튜브는 빌리루빈과 [citation needed]같은 빛에 민감한 분석 물질의 혈액을 채취하는 데 사용되는 불투명한 호박색 튜브입니다.

시험관에는 첨가제가 포함되어 있지만 각 튜브의 스토퍼에는 첨가제에 따라 색상이 구분되어 있습니다.제조사마다 색상이 다르지만 스토퍼 색상은 일반적으로 아래와 같이 각 첨가제에 관련되어 있습니다.튜브를 채우는 데 사용되는 니들에 각 튜브의 첨가물을 남겨둘 수 있으므로, 교차 오염이 한 번에 여러 튜브를 추출할 경우 샘플 검사에 부정적인 영향을 미치지 않도록 특정 순서로 추출해야 합니다."추첨 순서"는 수집 방법에 따라 다릅니다.아래는 진공 튜브 시스템(ETS) 수거 방법에 일반적으로 필요한 흡입 순서이며 첨가제 및 [9][10]색상을 나열한 가장 일반적인 튜브는 다음과 같습니다.

정맥시술/정맥절제술 편집을 위한 Vacutainer/샘플 튜브 유형
튜브 캡 색상 또는 유형 가법 사용방법 및 코멘트
혈액 배양병 폴리아네톨 술폰산나트륨(항응고제) 및 미생물용 배지 일반적으로 [11]오염 위험을 최소화하기 위해 먼저 그려집니다.두 병은 보통 한 번의 채혈로 수집됩니다. 하나는 호기성 유기체용이고 다른 하나는 혐기성 [12]유기체용입니다.
하늘색 구연산나트륨(항응고제) 프로트롬빈 시간(PT), 부분 트롬보플라스틴 시간(PTT) 및 트롬빈 시간(TT) 등의 응고 테스트.튜브는 100% 채워야 합니다.
밋밋한 빨강 무첨가 혈청 : 전보체 활성, 클리오글로불린
골드(때로는 빨간색과 회색 '타이거 탑')[13] 응고활성제 및 혈청분리겔[14] 혈청 분리 튜브:튜브의 반전은 응고를 촉진한다.대부분의 화학, 내분비, 혈청 검사는 간염과 HIV를 포함한다.
짙은 녹색 헤파린나트륨(항응고제) 염색체검사, HLA형, 암모니아, 젖산염
민트 그린 리튬 헤파린(항응고제) 혈장. 튜브의 반전 작용은 응고를 방지합니다.
라벤더('보라') EDTA(첼레이터/항응고제) 전혈 : CBC, ESR, Coombs 검사, 혈소판 항체, 흐름 세포측정법, 타크로리무스 및 시클로스포린 혈중 농도
핑크 EDTA(첼레이터/항응고제) 혈액형과 교차 매칭, 직접 Coombs 테스트, HIV 바이러스 부하
로열 블루 EDTA(첼레이터/항응고제) 미량 원소, 중금속, 대부분의 약물 수준, 독성학
탠 EDTA(첼레이터/항응고제) 이끌다
회색 포도당, 젖산[15]
노란 색 산-구연산-덱스트로스 A(항응고제) 조직형성, DNA 연구, HIV 배양
진주("흰색") 분리겔, 컴브 및 (K2)EDTA 아데노바이러스, 톡소플라스마 및 HHV-6 PCR

어린이용

상세정보 : 어린이 통증관리

리도카인 이온토포레시스를 사용하면 [16]소아 정맥시 통증을 줄이고 고통을 완화하는 데 효과적이다.무바늘 분말 리그노카인 전달 시스템은 아이들의 정맥 [17][18]천자 통증을 줄여주는 것으로 나타났다.신속한 피부 마취는 국소 마취 침윤에 의해 달성될 수 있지만, 바늘에 겁을 먹거나 피부를 일그러뜨려 혈관 접근이 더 어려워지고 의료 종사자의 바늘 노출 위험이 증가할 수 있다.피부마취는 국소마취 또는 리도카인 이온토포레시스(iontophoresis)를 통해 바늘 없이 이루어질 수도 있다.반면, 비침습성 피부 마취는 리도카인 이온토포레시스(lidocaine iontoporesis)에 의해 기초 조직을 왜곡하지 않고 5-15분 안에 확립할 수 있다. 여기서 직류 전류는 양극 [citation needed]아래에 배치될 때 양으로 대전된 리도카인 분자의 피부 침투를 촉진한다.

한 연구는 리도카인의 이온영동 투여가 6-17세 아동의 정맥시술에 피부마취를 제공하는 데 안전하고 효과적이라고 결론지었다.이 기술은 모든 어린이에게 적용되지 않을 수 있습니다.향후 연구는 어린이의 피부 마취를 위한 최소 유효 이온토포레틱 용량과 리도카인 이온토포레시스 마취 효과 및 만족도와 국소 마취 크림 및 피하 [16]침윤의 비교에 대한 정보를 제공할 수 있다.

아동의 정맥시술과 관련된 통증에 대한 비약리학적인 치료법에는 최면과 주의가 포함된다.이러한 치료법은 자가 보고 통증을 감소시켰으며 인지-행동치료(CBT)와 결합하면 통증 감소가 훨씬 더 컸다.다른 개입은 효과적이지 않은 것으로 밝혀졌는데, 이는 제안, 공기 배출, 부모 코칭에 대한 주의 산만함 등이 [19]고통과 고통에 대한 통제와 다르지 않았다.

바늘과 주사기 포함

몇몇 의료 종사자들은 정맥시술에 주사 바늘 기술을 사용하는 것을 선호한다.사르스테트는 이 [20]원리를 이용한 채혈 시스템(S-Monovette)을 제조한다.이 방법은 노인, 암, 심한 화상, 비만 또는 정맥이 불안정하거나 약한 사람에게 선호될 수 있습니다.주사기는 수동으로 작동하므로 흡입량을 쉽게 조절할 수 있습니다.이것은 특히 정맥이 작아서 진공관 흡입으로 쓰러질 수 있는 경우에 도움이 됩니다.어린이 또는 혈액의 양이 제한될 수 있는 다른 상황에서는 검사실에서 필요로 하는 다양한 첨가물에 혈액을 분배하기 전에 혈액을 얼마나 얻을 수 있는지 아는 것이 도움이 될 수 있습니다.또 다른 대안은 유치된 대마초에서 [21]피를 뽑아내는 것이다.

혈액 배양

채혈이 필요할 때가 있어요.그 배양은 혈액에 병원균이 있는지 여부를 결정할 것이다.보통 혈액은 무균이다.배양액에서 혈액을 채취할 때는 알코올 대신 베타딘과 같은 멸균용액을 사용한다.이 작업은 멸균 장갑을 사용하여 수행되며, 수술 용액을 닦아내거나, 펑크 부위를 만지거나, 멸균 프로세스를 손상시키지 않습니다.혈액 배양에서 피부 보상제의 지속적인 존재는 심내막염을 나타낼 수 있지만 가장 자주 오염 물질로 발견되는 만큼 가능한 멸균 방식으로 시술하는 것이 중요합니다.연마성 피부 준비 방법을 사용하는 것이 좋습니다.이것은 각질을 오염시키는 [22]박테리아와 함께 각질 상층을 제거한다.전통적으로 포비돈-요오딘이 사용되었지만 영국에서는 70% 에탄올 또는 이소프로필 알코올 용액에 2% 클로르헥시딘이 선호되며 건조될 때까지 시간이 필요합니다.혈액 배양물을 채취할 때 사용하는 용기의 윗부분도 유사한 용액을 사용하여 소독해야 합니다.일부 실험실은 요오드가 혈액이 병으로 들어가는 고무 마개를 분해하여 오염물질이 [citation needed]용기로 유입되도록 하는 것으로 생각되는 요오드 사용을 적극적으로 금지할 것입니다.

혈액은 진공관처럼 생겼지만 모양이 다른 특별한 수송용 병으로 수집된다.혈액 배양병에는 미생물이 배양 실험실로 운반되는 동안 존재하는 모든 미생물을 보존하기 위한 운반 배지가 들어 있습니다.병원균이 혐기성(산소 없이 사는 것)인지 유산소성(산소와 함께 사는 것)인지 알 수 없기 때문에 혈액을 채취하여 둘 다 검사한다.먼저 에어로빅 병을 채우고, 그 다음에 혐기병을 채웁니다.단, 주사기를 사용하여 채취할 경우에는 혐기성 병을 먼저 충전한다.나비채취키트를 사용할 경우 먼저 에어로빅병을 충전하고 튜브 내의 공기를 산소함유병 [citation needed]안으로 배출한다.

특별히 설계된 채혈병은 주사기 채혈이나 나비 채혈 방법을 사용하지 않아도 됩니다.이 특수 설계된 병은 정기적인 정맥 채취에 사용되는 진공 튜브 홀더에 들어가는 긴 목을 가지고 있습니다.이 병들은 또한 추가적인 정맥 [citation needed]천자 없이도 진공관을 통해 다른 혈액 검체를 채취할 수 있게 해준다.

채혈량은 미생물의 최적의 회복을 위해 중요하다.일반적으로 최대 10mL의 혈액이 사용되지만 채수병 제조업체의 권장 사항에 따라 달라질 수 있습니다.영유아 채수는 1~5 mL이다.채혈량이 너무 적으면 혈액 대 영양소의 비율이 미생물의 성장을 저해한다.채혈이 너무 많으면 병원 유발 빈혈의 위험이 있고 혈액 대 영양소의 비율이 반대 방향으로 기울어지기 때문에 최적의 [citation needed]성장에도 전도성이 떨어진다.

그런 다음 전문 장치에서 24시간 동안 병을 배양한 후 연구실 기술자가 병을 연구 및/또는 테스트합니다.이 단계를 통해 극소수의 박테리아(잠재적으로 1개 또는 2개 생물)가 식별 +/-항생생물 내성 테스트에 충분한 수준으로 증식할 수 있습니다.현대의 혈액배양병은 세균이 증식하면 색이 변하며 기계로 자동으로 판독할 수 있는 표시기가 있다(이 때문에 이 병에 있는 바코드 스티커는 실험실의 자동화 시스템에 의해 사용되므로 제거해서는 안 된다).[citation needed]

동물로부터 혈액 샘플을 채취하다

살아있는 실험실 동물로부터 혈액 샘플을 채취할 [23][24]수 있는 방법은 다음과 같다.

  • 마취가 필요 없는 채혈:
    • 수맥(쥐, 쥐, 기니피그)
    • 등쪽 페달 정맥(쥐, 마우스)
  • 마취가 필요한 채혈(국소 마취/전신 마취):
    • 꼬리 정맥(쥐, 마우스)
    • 테일스냅(마이스)
    • 안와정맥동(랫드, 마우스)
    • 경정맥(쥐, 쥐)
    • 임시 캐뉴레(쥐, 마우스)
    • 혈관 캐뉴레이션(기네아 돼지, 족제비)
    • 족저정맥(기네아돼지)
    • 외이도 정맥 또는 동맥(토끼)
  • 단말 절차:
    • 심장 천자(쥐, 쥐, 기니피그, 토끼, 족제비)
    • 안와정맥동(랫드, 마우스)
    • 후정맥(쥐, 쥐)

혈액 샘플 채취의 양은 실험 동물에게 매우 중요하다.체액을 대체하지 않는 모든 비말단 혈액 채혈은 한 번에 건강한 정상 성인 동물에서 총 순환 혈액량의 10%까지 제한되며 채혈은 3~4주 후에 반복될 수 있다.짧은 간격으로 반복 혈액 검체가 필요한 경우 24시간마다 최대 0.6ml/kg/일 또는 동물 총 혈액량의 1.0%를 제거할 수 있습니다.성인 동물의 예상 혈액량은 체중 55~70ml/kg입니다.나이가 많고 비만인 동물들은 주의해야 한다.채혈량이 총 혈액량의 10%를 초과하면 체액 보충이 필요할 수 있습니다.NIH(National Institute of Health)가 권장하는 최고의 유체 대체제는 LRS(Lactated Ringer's Solution)입니다.채혈량이 전체 순환기 혈액량의 30%를 초과하면 동물이 저혈당증에 [24]걸리지 않도록 충분한 주의를 기울여야 한다.

혈중 알코올 검사

일반적으로 혈중 알코올 검사를 위한 검체를 얻을 때 정맥시술 부위를 깨끗하게 하기 위해 이소프로필 알코올을 사용하지 않는 것이 좋습니다.이는 이론적으로 분석에 영향을 미칠 수 있는 알코올 기반 세정제 사용과 관련된 잠재적인 법적 영향과 크게 관련이 있습니다.적절한 수집을 보장하기 위해 플루오르화나트륨/옥살산칼륨 방부제와 비알코올 기반 세정제를 함유한 수많은 경찰 알코올 수집 키트가 판매되고 있습니다.이 경우 [citation needed]이소프로필 알코올 대신 비누와 뜨거운 물 또는 포비돈-요오드 면봉을 사용하는 것이 좋습니다.

「 」를 참조해 주세요.

  • 동맥혈은 정맥 대신 동맥에서 채취합니다

레퍼런스

  1. ^ a b Higgins, Dan (28 September 2004). "Venepuncture". Nursing Times. 100 (39): 30–1. PMID 15500234.
  2. ^ Dg, Dayyal. "PROCEDURES FOR THE COLLECTION OF BLOOD FOR HEMOTOLOGICAL INVESTIGATIONS". BioScience Pakistan. BioScience Pakistan. ISSN 2521-5760.
  3. ^ Lavery, I; Ingram, P (August 2005). "Venepuncture: Best Practice". Nurs Stand. 19 (49): 55–65. doi:10.7748/ns2005.08.19.49.55.c3936. PMID 16134421.
  4. ^ Ialongo, Cristiano; Bernardini, Sergio (2016-02-15). "Phlebotomy, a bridge between laboratory and patient". Biochemia Medica. 26 (1): 17–33. doi:10.11613/BM.2016.002. ISSN 1330-0962. PMC 4783087. PMID 26981016.
  5. ^ "'A Little Sting' Can Become a Debilitating Injury". Retrieved 25 March 2020.
  6. ^ McCall, Ruth (2020). Phlebotomy Essentials (7th ed.). Wolters Kluwer. p. 193. ISBN 9781496387073.
  7. ^ Perry, Sally (2007). "Ask the Lab: Hemolyze blood specimens". Nursing.advanceweb.com. Retrieved 2013-12-29.
  8. ^ a b Castellini MA, Castellini JM, Kirby VL (1992). "Effects of standard anticoagulants and storage procedures on plasma glucose values in seals". J Am Vet Med Assoc. 201 (1): 145–8. PMID 1644639.
  9. ^ "Collection". www.osfhealthcare.org. Retrieved 2019-12-08.
  10. ^ Christopher Parker (2019-01-31). "Phlebotomy Services". University of North Carolina School of Medicine.
  11. ^ Pagana, KD; Pagana, TJ; Pagana, TN (19 September 2014). Mosby's Diagnostic and Laboratory Test Reference - E-Book. Elsevier Health Sciences. p. xiii. ISBN 978-0-323-22592-2.
  12. ^ "Chapter 3.4.1: Blood cultures; general detection and interpretation". Clinical Microbiology Procedures Handbook. Wiley. 6 August 2020. ISBN 978-1-55581-881-4.
  13. ^ "Test Tube Guide and Order of Draw" (PDF). Guthrie Laboratory Services. June 2019.{{cite web}}: CS1 maint :url-status (링크)
  14. ^ "Specimen requirements/containers". Pathology & Laboratory Medicine, UCI School of Medicine. Retrieved 2020-09-10.
  15. ^ Amitava Dasgupta; Jorge L. Sepulveda (20 July 2019). Accurate Results in the Clinical Laboratory: A Guide to Error Detection and Correction. Elsevier Science. p. 131. ISBN 978-0-12-813777-2.
  16. ^ a b Rose, John B.; Galinkin, Jeffrey L.; Jantzen, Ellen C.; Chiavacci, Rosetta M. (2002). "A Study of Lidocaine Iontophoresis for Pediatric Venipuncture". Anesthesia & Analgesia. 94 (4): 867–71, table of contents. doi:10.1097/00000539-200204000-00017. PMID 11916787. S2CID 25591907.
  17. ^ Lacroix, Helene (October 2008). "A needle-free powder lignocaine delivery system reduced the pain of venipuncture in children". Evidence-Based Nursing. 11 (4): 106. doi:10.1136/ebn.11.4.106. PMID 18815318. S2CID 44888650.
  18. ^ Robertson, J (January 2006). "Liposomal lidocaine improved intravenous cannulation success rates in children". Evid-Based Nurs. 9 (1): 10. doi:10.1136/ebn.9.1.10. PMID 16437788. S2CID 45422187.
  19. ^ Robertson, J (July 2007). "Review: Distraction, Hypnosis, and Combined Cognitive-Behavioural Interventions Reduce Needle Related Pain and Distress in Children and Adolescents". Evid-Based Nurs. 10 (3): 75. doi:10.1136/ebn.10.3.75. PMID 17596380. S2CID 34364928.
  20. ^ "Blood collection with the S-Monovette" (PDF). Retrieved 27 May 2020.
  21. ^ Lesser, Finnian D; Lanham, David A; Davis, Daniel (6 May 2020). "Blood sampled from existing peripheral IV cannulae yields results equivalent to venepuncture: a systematic review". JRSM Open. 11 (5). doi:10.1177/2054270419894817. PMC 7236571. PMID 32523703.
  22. ^ Garcia, RA; Spitzer, ED; Beaudry, J; Beck, C; Diblasi, R; Gilleeny-Blabac, M; Haugaard, C; Heuschneider, S; Kranz, BP; McLean, K; Morales, KL; Owens, S; Paciella, ME; Torregrosa, E (November 2015). "Multidisciplinary Team Review of Best Practices for Collection and Handling of Blood Cultures to Determine Effective Interventions for Increasing the Yield of True-positive Bacteremias, Reducing Contamination, and Eliminating False-positive Central Line-associated Bloodstream Infections". Am J Infect Control. 43 (11): 1222–37. doi:10.1016/j.ajic.2015.06.030. PMID 26298636.
  23. ^ Hoff, J. (2000). "Methods of Blood Collection in the Mouse" (PDF). Lab Animal. 29 (10): 47–53.
  24. ^ a b Parasuraman, S; Raveendran, R; Kesavan, R (2010). "Blood sample collection in small laboratory animals". Journal of Pharmacology and Pharmacotherapeutics. 1 (2): 87–93. doi:10.4103/0976-500X.72350. PMC 3043327. PMID 21350616.